Campylobacter jejuni

Helicobacter pylori

Campylobacter fetus

Arcobacter butzlei

Oligella urethralis

método do fosfotungstato

método do picrato

méodo da diacetilmonoxima

método da ortotoluidina

método da uricase

hexocinase e peroxidase

glicose desidrogenase

glicose oxidase e peroxidase

hexocinase

reativo de Benedict

alanina aminotransferase

miosina

fosfatase alcalina

troponina

aspartato aminotransferase

reprodutibilidade

sensibilidade

especificidade

erro sistemático

desvio padrão

O tempo de sangramento, que pode ser medido pelo método de Duke, avalia o tempo durante o qual marcas de sangue são deixadas em um papel de filtro.

O tempo de protrombina é alterado por deficiência nos fatores XII e XI.

O tempo de trombina mede a velocidade de coagulação do sangue após a retirada da trombina por cromatografia.

O tempo de tromboplastina parcial ativada avalia apenas os fatores da via extrínseca da coagulação.

A heparina inibe diretamente o fator XII. Portanto, o acompanhamento de seu efeito anticoagulante somente pode ser realizado por meio da dosagem desse fator.

O TOTG é realizado por meio da ingestão de 75 mg de glicose, seguida de dosagens enzimáticas de AST e ALT.

O TOTG não deve ser realizado em gestantes, devido aos riscos para o feto.

Para a realização do TOTG, é correto administrarem-se 75 g ou 100 g de glicose e realizarem-se dosagens de glicose até 2 ou 3 horas após a ingestão.

Durante a realização do TOTG, as dosagens de glicose são feitas por meio de imunoensaio.

Diversos testes laboratoriais para diagnóstico de infecção por HIV detectam a presença de lipídios do envelope viral.

Testes de ELISA (enzyme linked immunosorbent assay) pesquisam anticorpos anti-HIV circulantes.

O método que utiliza fluorescência para diagnóstico de infecção por HIV detecta enzimas virais.

Um paciente portador de infecção assintomática por HIV pode receber diagnóstico por meio de testes laboratoriais que dosam a atividade da transcriptase reversa livre no plasma.

O método de detecção do HIV por PCR (polymerase chain reaction), apesar de usado para o diagnóstico, não serve para a quantificação da carga viral.

Os componentes para essa solução devem, obrigatoriamente, ser esterilizados antes do preparo da mesma, pois não há meios de esterilização que mantenham inalteradas as características bioquímicas dessa solução.

Para o correto preparo da solução, devem ser adicionados 39,6 g de asparagina e 53,4 g de alanina a 1 L de água.

O procedimento correto de preparo da solução consiste na adição dos solutos a um volume de solvente menor que o volume final e na medição precisa do volume final da solução em balão volumétrico.

A solução de asparagina e a solução de alanina devem ser preparadas separadamente e somente misturadas ao final, para que não sofram polimerização.

O solvente a ser utilizado deve ser etanol e não, água, para se evitar a contaminação da solução.

Caso seja necessário favorecer a proliferação de todos os microrganismos presentes na amostra, é correto utilizar-se um meio de cultura seletivo.

O ágar-sangue é um meio de enriquecimento freqüentemente utilizado para a cultura.

Se for necessária a obtenção de colônias puras, a partir de unidades formadoras de colônias, devem-se usar somente meios de cultura líquidos.

O controle de qualidade de meios de cultura feito pela incubação do meio sem a adição intencional de microrganismos é suficiente para a avaliação tanto de resultados falsos-positivos quanto de falsos-negativos.

O meio ágar chocolate apresenta, em sua composição, predominantemente lipídios, o que favorece o crescimento de microrganismos Gram positivos.