A fixação do material antes do início da coloração pode ser feita por aquecimento suave ou por contato com metanol.

Após o contato com o primeiro corante, não há contato da amostra com agentes fixadores.

Para que a coloração de Gram seja eficaz, a parede celular dos microrganismos deve ser removida na primeira etapa do processo, de forma que os corantes consigam se ligar aos seus alvos no interior das células.

A amostra a ser preparada para coloração por Gram não pode estar em solução salina, devido à interferência que essa solução gera no resultado da coloração.

Para a técnica de Gram não se deve utilizar esfregaço como preparo de lâmina.

A amostra que será aplicada na lâmina para análise pelo método de Gram deve ser filtrada em filtro de celulose com poros de 0,22 micrômetros e apenas o material não retido no filtro deve ser aplicado sobre a lâmina.

A solução IV pode ser armazenada próximo a fontes de calor.

Lâminas usadas para coloração de microrganismos não patogênicos pelo método de Gram devem ser descartadas em recipientes, nos quais seja especificado o nível de risco biológico.

Para o preparo da solução I, devem ser adicionados 10 mg de cristal violeta a 100 mL de álcool.

A solução de oxalato de amônio deve ser preparada em temperaturas acima de 44o C, para evitar a precipitação do amônio.

A solução de lugol é preparada a partir de iodo e iodeto de potássio diluídos em água.

O preparo da solução de safranina não requer o uso de balança, uma vez que os dois compostos somente são encontrados na forma líquida.

A tindalização é um processo de desinfecção por calor seco utilizado para equipamentos metálicos.

A única forma de os meios de cultura serem esterilizados é pela exposição à radiação gama, uma vez que o aquecimento degrada os componentes de diversos tipos de meio.

A única forma de os meios de cultura serem esterilizados é pela exposição à radiação gama, uma vez que o aquecimento degrada os componentes de diversos tipos de meio.

Tanto o termo esterilização quanto o termo desinfecção estão relacionados à redução na quantidade de microrganismos capazes de se reproduzir.

O termo "concentração inibitória mínima" corresponde à menor concentração de um antibiótico capaz de esterilizar e eliminar pirógenos de um meio de cultura.

O termo "concentração inibitória mínima" corresponde à menor concentração de um antibiótico capaz de esterilizar e eliminar pirógenos de um meio de cultura.

O preparo correto de uma diluição seriada de antimicrobiano para teste de sensibilidade do microrganismo é realizado adicionando-se a cada um de 5 diferentes tubos 0,1 mL do meio de cultura, 10 microlitros de inóculo e água destilada em volumes que variam de 5 mL a 25 mL, com diferença de 5 mL entre cada tubo.

Colocar, sobre meio de cultura sólido inoculado com o microrganismo, discos de papel que contenham determinada massa do antimicrobiano é uma forma correta de se realizar teste qualitativo de sensibilidade de microrganismos a antimicrobianos.

O meio de eosina-azul de metileno é capaz de diferenciar microrganismos gram-positivos capazes de fermentar sacarose dos incapazes de fermentar esse carboidrato.

O meio de cultura xilose-lisina-deoxicolato é um meio enriquecido e não-seletivo.

O isolamento de bacilos gram-negativos a partir de amostras contaminadas é facilitado pelo uso de meios de cultura diferenciais e seletivos.

Sais biliares não são usados em meios de cultura porque têm propriedades bacteriostáticas.

A bactéria causadora da difteria apresenta características de microrganismo gram-negativo. Seu diagnóstico é feito por meio de cultura de material, sendo o crescimento de colônias observado somente em material colhido por biópsia pulmonar.

Listeria monocytogenes, um microrganismo patogênico freqüentemente detectado em derivados do leite, é um bacilo gram-positivo beta-hemolítico e catalase-positivo.

Microrganismos do gênero Bacillus são anaeróbios estritos incapazes de formar esporos.

A identificação de microrganismos do gênero Neisseria é feita em função de sua motilidade conferida por um flagelo.

Resíduos do grupo C devem ser identificados com o símbolo .

Restos de vidraria utilizada somente para preparo de solução salina e que tenha sido quebrada no laboratório, devem ser descartados como resíduos do grupo E.

Resíduos de origem animal, como órgãos de animais utilizados em testes de imunofluorescência, devem ser incinerados, e os resíduos, descartados, utilizando-se o símbolo  .

Resíduos do grupo B devem ser identificados com o símbolo .

O símbolo representa compostos inflamáveis.

Amostras provenientes de plantas não representam risco biológico nem tóxico.

Ruídos, vibrações, radiação ultravioleta e temperaturas muito baixas são considerados riscos físicos.

Os símbolos e devem ser colocados no local de armazenamento de dicromato de potássio e no de cianeto, respectivamente.

Em caso de parada cardiorrespiratória, a vítima não pode ser removida antes que se iniciem as manobras de compressão e ventilação.

Em caso de contato de solução de acrilamida com os olhos, deve-se proceder imediatamente à oclusão dos olhos com gaze estéril.

Os funcionários do laboratório devem ser instruídos a utilizar o chuveiro de emergência em caso de respingos de ácidos sobre a pele, porém não devem usá-lo quando de tratar de respingo de bases.

É correto utilizar-se o desfibrilador automático em um indivíduo que não apresente pulso carotídeo nem movimentos respiratórios após ter recebido uma descarga elétrica acidental.