5, 1, 2, 3, 4

5, 3, 1, 2, 4

4, 1, 2, 3, 5

4, 3, 1, 2, 5

Tanto a eletroforese quanto a cromatografia são métodos freqüentemente utilizados na detecção de células íntegras.

A principal diferença entre eletroforese e cromatografia está no fato de a primeira usar tampões e a segunda não.

Sistemas cromatográficos que utilizam fase reversa podem utilizar a fase móvel fluindo sob pressões relativamente altas, de 5.000 PSI, atravessando uma coluna contendo a fase estacionária.

Equipamentos para cromatografia em alta pressão (HPLC) apresentam componentes eletrônicos, porém não apresentam nenhum componente mecânico com partes móveis.

Para a realização de experimento de eletroforese é indispensável o uso da fita de celulose como suporte para a amostra.

Uma solução contendo o aminoácido glicina pode ser usada como tampão, uma vez que a glicina apresenta duas faixas tamponantes.

Durante todo o preparo do gel, deve-se evitar que ocorra a polimerização da acrilamida, pois a acrilamida polimerizada dificulta a separação das proteínas.

É necessário o uso de tampões em eletroforese para fazer que o pKa das proteínas da amostra se mantenha constante, caso contrário esse valor será alterado.

A eletroforese de proteínas é realizada com maior facilidade em solventes apolares, por facilitarem o tamponamento.

A eletroforese de hemoglobina é realizada em um sistema diferente do mencionado acima, pois a amostra utilizada não tem característica protéica, sendo um composto orgânico de baixa massa molecular.

Os componentes indicados pelos números 3, 4 e 6 na figura A são usados para definir a ampliação do material observado, porém não para ajustar o foco.

O componente indicado pelo número 7 na figura A tem função semelhante ao componente indicado por “detector” na figura C.

O espectrofotômetro ilustrado nas figuras B e C é utilizado em dosagens de enzimas.

Os equipamentos mostrados nas figuras A e B são usados rotineiramente na análise de células do sedimento urinário.

A figura A mostra um microscópio e as figuras B e C referemse a um citômetro de fluxo, ambos úteis em análises citológicas.

Caso haja lesão de hepatócitos, espera-se encontrar níveis séricos elevados de alanina-aminotransferase, uma vez que essa enzima catalisa uma etapa importante da síntese de bases nitrogenadas no hepatócito.

Durante uma situação de exercício intenso, o tecido muscular em exercício pode sintetizar moléculas de alanina a partir de piruvato e glutamato, enviando a alanina à circulação.

As células do sistema nervoso central humano não possuem enzimas capazes de converter alfa-cetoglutarato e amônia em glutamato.

Um aumento na concentração de fumarato é característico de deficiência em enzima do ciclo da uréia.

Em uma situação de hipoglicemia, os hepatócitos degradam lipídios para, a partir do seu produto de degradação, sintetizar moléculas de glicose.

A técnica de captura híbrida utiliza a hibridação de DNA e dispensa o uso de anticorpos.

A metodologia de escolha em bancos de sangue para evitar a transmissão do vírus da hepatite B por transfusão é a dosagem do anti-HBs.

O método mais sensível para a detecção do antígeno “e” do vírus da hepatite B (AgHBe) é a realização de hibridação para detecção de RNA viral.

Na fase de janela imunológica da hepatite B, as técnicas de PCR (polymerase chain reaction) não são capazes de detectar a presença do genoma viral no paciente portador do vírus.

No acompanhamento da evolução de uma infecção pelo vírus da hepatite B, é utilizada a detecção de antígenos virais e de anticorpos.

O retículo de Neubauer é utilizado em citometria de fluxo.

Para a contagem de eritrócitos, o método mais adequado é a fixação com metanol, coloração com corante de Wright e contagem em câmara de Fuchs.

Para a confirmação de uma possível leucopenia, é necessário realizar a coloração com peroxidase e Sudan B.

A dosagem de hemoglobina utilizando a solução de Drabkin quantifica apenas a hemoglobina extracelular, não sendo capaz de analisar a porção de hemoglobina contida nos eritrócitos.

A hemoglobina corpuscular média e o volume corpuscular médio podem ser calculados a partir dos valores de hematócrito, contagem de eritrócitos e dosagem de hemoglobina total.

Nas 3 imagens observam-se leucócitos.

A imagem C mostra um nematóide.

As imagens A e B mostram evidências de contaminação da amostra durante a coleta.

Na imagem A, podem ser observadas hemácias e hemácias crenadas.

O elemento mostrado na imagem C explica a urina escura descrita no texto.

Ao se centrifugar uma amostra de 3 mL de sangue, procedimento suficiente para a obtenção do soro, deve-se usar uma centrífuga em que o tubo se mantenha inclinado, de forma fixa, a 30o em relação ao eixo do rotor.

O método mais preciso para dosagem de bilirrubina conjugada é o imunoensaio, apesar de ele ser pouco utilizado devido ao seu custo.

A dosagem de gama-glutamil-transferase apresenta grande especificidade, uma vez que as dosagens só se encontram aumentadas em conseqüência de infecções virais.

A dosagem de bilirrubina conjugada ao ácido glicurônico, também chamada de reação direta, quando é usado o método de Malloy e Evelyn modificado, mede a quantidade de bilirrubinas não-ligadas à albumina.

As aminotransferases a que se refere o texto são enzimas capazes de transferir grupos amino de adenina para guanina.

Para o preparo de 50 mL de uma solução de 2,4 dinitrofenilidrazina 1 mmol/L em HCl, deve-se utilizar uma pipeta graduada para adicionar o HCl à dinitrofenilidrazina em um béquer, até o volume de 50 mL.

A dosagem de proteínas no plasma pelo método do biureto permite uma estimativa da concentração de enzimas hepáticas circulantes.

A eletroforese na presença de dodecilsulfato de sódio, uréia 7 mol/L e ditiotreitol é um método adequado e comum para a medida de atividade enzimática em análises clínicas.

Caso o resultado de uma dosagem enzimática, em um sistema em que o único componente de origem biológica seja o plasma sanguíneo, e ainda que seja expresso por meio da alteração de cor do produto formado em uma reação, o equipamento mais adequado à quantificação de tal alteração é o citômetro de fluxo.

Para a dosagem de aspartato-aminotransferase pelo método da quantificação indireta do oxaloacetato, são necessários aspartato e alfa-cetoglutarato como substratos.