O TOTG é realizado por meio da ingestão de 75 mg de glicose, seguida de dosagens enzimáticas de AST e ALT.

O TOTG não deve ser realizado em gestantes, devido aos riscos para o feto.

Para a realização do TOTG, é correto administrarem-se 75 g ou 100 g de glicose e realizarem-se dosagens de glicose até 2 ou 3 horas após a ingestão.

Durante a realização do TOTG, as dosagens de glicose são feitas por meio de imunoensaio.

Diversos testes laboratoriais para diagnóstico de infecção por HIV detectam a presença de lipídios do envelope viral.

Testes de ELISA (enzyme linked immunosorbent assay) pesquisam anticorpos anti-HIV circulantes.

O método que utiliza fluorescência para diagnóstico de infecção por HIV detecta enzimas virais.

Um paciente portador de infecção assintomática por HIV pode receber diagnóstico por meio de testes laboratoriais que dosam a atividade da transcriptase reversa livre no plasma.

O método de detecção do HIV por PCR (polymerase chain reaction), apesar de usado para o diagnóstico, não serve para a quantificação da carga viral.

Os componentes para essa solução devem, obrigatoriamente, ser esterilizados antes do preparo da mesma, pois não há meios de esterilização que mantenham inalteradas as características bioquímicas dessa solução.

Para o correto preparo da solução, devem ser adicionados 39,6 g de asparagina e 53,4 g de alanina a 1 L de água.

O procedimento correto de preparo da solução consiste na adição dos solutos a um volume de solvente menor que o volume final e na medição precisa do volume final da solução em balão volumétrico.

A solução de asparagina e a solução de alanina devem ser preparadas separadamente e somente misturadas ao final, para que não sofram polimerização.

O solvente a ser utilizado deve ser etanol e não, água, para se evitar a contaminação da solução.

Caso seja necessário favorecer a proliferação de todos os microrganismos presentes na amostra, é correto utilizar-se um meio de cultura seletivo.

O ágar-sangue é um meio de enriquecimento freqüentemente utilizado para a cultura.

Se for necessária a obtenção de colônias puras, a partir de unidades formadoras de colônias, devem-se usar somente meios de cultura líquidos.

O controle de qualidade de meios de cultura feito pela incubação do meio sem a adição intencional de microrganismos é suficiente para a avaliação tanto de resultados falsos-positivos quanto de falsos-negativos.

O meio ágar chocolate apresenta, em sua composição, predominantemente lipídios, o que favorece o crescimento de microrganismos Gram positivos.

O material coletado por punção não é adequado à cultura de microrganismos, cujo crescimento é inviabilizado pela pressão a que o material é submetido durante a aspiração.

A desinfecção com álcool 70% é suficiente para se preparar o material a ser utilizado para armazenamento do líquido coletado.

Após a coleta do material, o tubo deve ser esterilizado em chama de bico de Bunsen.

A coleta de material da cavidade pleural para bacterioscopia deve ser feita em seringa e tubo heparinizados, para que o sangue normalmente presente nesse espaço não prejudique a análise.

Uma das possíveis formas de se preparar o material a ser utilizado para a coleta é a esterilização por raios gama.

A dosagem de aspartato aminotransferase é um teste sensível e específico para a determinação de lesão hepática, pois tal enzima é exclusiva do hepatócito.

A avaliação da função hepática não pode ser feita por meio de dosagem de enzimas no sangue, pois estas são secretadas para o intestino e não, para a circulação.

A avaliação da função hepática não pode ser feita por meio de dosagem de enzimas no sangue, pois estas são secretadas para o intestino e não, para a circulação.

A análise da velocidade de formação do produto em função da concentração do substrato pode ser corretamente considerada uma análise de cinética enzimática.

A dosagem de enzimas por espectrofotometria pode ser automatizada, de forma que um grupo de amostras de diferentes pacientes pode ser colocado em um mesmo tubo, pois o espectro assim obtido fornece as dosagens individuais para cada paciente.

O xenodiagnóstico consiste na exposição de Xenopus laevis ao sangue do paciente, para posterior pesquisa do parasita.

O diagnóstico sorológico é realizado pela detecção de IgG contra Tripanosoma cruzi em até 5 dias após a inoculação pelo vetor, pois o IgG passa a ter níveis não-detectáveis após esse período.

A análise microscópica direta de um concentrado de leucócitos obtido por centrifugação permite a visualização do parasita em pacientes na fase aguda da doença.

O imunodiagnóstico não tem aplicação na fase crônica da doença de Chagas, pois o número de parasitas circulantes é geralmente menor que na fase aguda.

Não é viável o uso de meios de cultura para aumentar a sensibilidade dos testes de detecção dos parasitas, uma vez que estes somente se reproduzem se tanto o hospedeiro quanto o vetor participarem de seu ciclo de vida.

Sangue e derivados de qualquer paciente devem ser considerados potencialmente contaminados com agentes transmissíveis.

O uso de óculos de proteção só é necessário ao se fazer inspeção visual próxima de materiais que contenham sangue contaminado por HIV.

Máscaras somente devem ser usadas quando houver risco de transmissão de infecções respiratórias, como tuberculose, por exemplo.

Agulhas devem ser recolocadas em sua capa original antes do descarte para evitar contaminação de quem manipule o descarte.

Materiais que não possam ser submetidos a autoclave devem ser obrigatoriamente descartados caso sejam contaminados com respingos de material que contenha HIV-1.

A infecção por HIV freqüentemente apresenta uma redução na população de linfócitos CD4 negativos, isto é, que não apresentam a molécula CD4 em sua superfície.

Devido à característica de invasão celular do vírus HIV, não é viável detectar proteínas virais por dosagens séricas.

O organismo humano não consegue produzir anticorpos contra o vírus HIV-1.

Existem ensaios capazes de detectar, no plasma, RNA viral do vírus HIV.

O método de diagnóstico do HIV denominado western blot, que utiliza cromatografia para a detecção, é mais sensível que os testes que usam eletroforese.

Glicosúria de 70 mg/dL colhida após jejum de 12 h de um indivíduo com função renal normal afasta a suspeita de diabetes.

A detecção de cetonúria dispensa a determinação de glicose na urina, pois a cetonúria somente é detectada quando a glicosúria é muito intensa.

Corpos cetônicos são detectáveis ao exame de microscopia óptica do sedimento urinário.

Tanto a glicosúria quanto a cetonúria podem ser avaliadas por meio de fitas que contenham reagentes impregnados.

A determinação do tipo de cilindros do sedimento pode ser automatizada com o uso de fitas reativas.