O tecido cardíaco é rico em alanina aminotransferase (TGP) e no curso de um enfarte do miocárdio, a atividade sérica desta enzima aumenta a partir da 6ª hora, atinge sua taxa máxima em 24 a 48 horas e retorna a valores normais em 4 a 5 dias na ausência de complicações.

As aminotransferases têm como coenzima o ácido de piridoxal

No começo de uma hepatite aguda, se as lesões celulares não são demasiado intensas, somente as enzimas citoplasmáticas são liberadas e a taxa sérica da aspartato aminotransferase é mais elevada do que a da alanina aminotransferase.

As aminotransferases são dosadas no soro e diferem entre si por sua especificidade de ação: a TGO cataliza a reação Ac. Alfacetoglutárico + Ac. Glutâmico + Ac. Oxaloacético + Ác. Aspártico e a TGP cataliza a reação Ac. Alfacetoglutárico + Alanina + Ac. Glutâmico + Ac. Pirúvico.

A indicação essencial da dosagem espectrofotométrica das aminotransferases é o diagnóstico e a vigilância da evolução das hepatites agudas.

Os íons dosados no ionograma são sódio, cloreto, potássio e cálcio.

O sódio é o cátion mais abundante nos líquidos extracelulares

A dosagem do potássio permite apreciar os riscos miocárdicos ligados a uma hipo ou uma hipercalemia.

A hiponatremia corresponde a uma diminuição da concentração do cloreto no plasma.

Contrariamente ao que ocorre com o Na e Cl, cuja eliminação renal é praticamente abolida nos estados de hiponatremia e hipocloremia, a excreção de K exibe um limite mínimo, abaixo do qual não desce mesmo em presença de intensa hipopotassemia.

Os dois métodos mais utilizados rotineiramente em quase todos os laboratórios de análises clínicas são o de sedimentação espontânea (método de Faust) e o de sendimentação por centrifugação (método de Lutz ou Hoffmann, Pons e Janer).

Os conservadores utilizados nas amostras de fezes para envio do material ao laboratório podem ser: o frio, onde se coloca o recipiente contendo as fezes na geladeira; formol a 20%, onde as mesmas devem ser bem homogeneizadas; MIF, conservador muito difundido e o SAF que são as iniciais dos componentes de um dos fixadores mais largamente usados.

Os métodos de exame de fezes podem ser de dois tipos: qualitativos que não acusam a presença de cistos, mas permitem a visualização de ovos e, quantitativos que permitem a contagem dos ovos nas fezes e indicam a quantidade provável de vermes no paciente

O método qualitativo de flutuação espontânea ou método de Willis é usado para pesquisa de ovos de helmintos (principalmente ancilostomídeos) e cistos de protozoários

A solução de lugol é indicada para corar os cistos de protozoários e corar as larvas vivas de helmintos para exame microscópico, possuindo a seguinte fórmula: Iodo (1g), Iodureto de potássio (10g) e Água destilada (100 ml).

Para a visualização de ovos de Schistosoma mansoni, utiliza-se a sedimentação por centrifugação ou a sedimentação espontânea (HPJ e Kato).

Para visualização de ovos de Trichuris trichiura, utiliza-se o método de Baermann-Morales ou Rugai

Para a visualização de ovos de Enterobius vermiculares, o método utilizado é o de Graham

Na Giardíase, os citos são visualizados pelo método de Faust, sedimentação por centrifugação ou sedimentação espontânea (HPJ).

Na Teníase, os ovos são visualizados através da Tamização ou fita gomada

Considerando os estudos existentes sobre a Schistosoma mansoni, é incorreto afirmar:

A morfologia do S. mansoni deve ser estudada nas várias fases que podem ser encontradas em seu ciclo evolutivo: adulto (macho e fêmea), ovo, miracídio, esporocisto e cercária

Ao penetrar no caramujo, o esporocisto perde os cílios, glândulas de penetração, terebratorium e transforma-se na cercária.

A transmissão é através da penetração ativa das cercárias na pele e mucosa. As cercárias penetram mais freqüentemente nos pés e pernas por serem áreas do corpo que mais ficam em contato com águas contaminadas.

Os ovos são os elementos fundamentais da patogenia da esquitossomose. Quando em grande número, podem provocar hemorragias, edemas da submucosa e fenômenos degenerativos, com formações ulcerativas pequenas e superficiais.

O exame direto ou a fresco permite visualizar os parasitos vivos, movimentando-se. A gota de sangue é colhida no centro de uma lâmina, coberta com lamínula e examinada imediatamente. Caso queira retardar a coagulação, pode adicionar uma ou duas gotas de salina.

Os locais mais usados para a colheita do sangue são: a polpa digital do anular direito ou lobo da orelha, onde a pele é fina e há boa irrigação sanguínea

Existem dois tipos de exame em esfregaços: o esfregaço em camada delgada (gota estirada) e o esfregaço em camada espessa (gota espessa). O primeiro é mais utilizado em diagnóstico epidemiológico e o segundo é mais usado para identificação da forma e espécie de vários parasitos.

Os corantes mais usados são os derivados do Romanowsky. Destes, os mais comuns são o Giemsa, o Leishman e o azul-de-metileno.

O esfregaço corado pelo Leishman necessita de fixação prévia pelo álcool metílico. Em geral, as lâminas preparadas por esse método não são muito duráveis nem tão perfeitas quanto pelo método de Giemsa, mas é uma técnica muito utilizada em vista da rapidez e facilidade de execução

1, 2 e 3, apenas

2, apenas

2, 3 e 4, apenas

2 e 4, apenas.

1, 2, 3 e 4

A contagem diferencial dos leucócitos estabelece a freqüência relativa de cada tipo encontrado no esfregaço, ou seja, a fórmula leucocitária relativa, que compara ao número global de leucócitos fornece a fórmula leucocitária absoluta.

A fórmula leucocitária relativa determina a relação percentual entre as distintas variedades de leucócitos e a fórmula leucocitária absoluta fornece o número de cada tipo de leucócitos por milímetro cúbico de sangue.

De modo geral, as infecções bacterianas e infestações levam a leucopenia: diminuição de leucócitos; e as viroses e intoxicações a uma leucocitose: aumento do número de leucócitos.

Na mononucleose infecciosa os linfócitos atípicos são denominados células de "Downey" e o quadro hematológico apresenta leucocitose com mononucleose atípica, neutropenia com desvio à esquerda e poucas células plasmáticas

De grande importância prática reveste-se o aparecimento de granulações tóxicas nos neutrófilos, que variam de aspecto e número.

O tempo de sangramento (TS) é um teste de função vascular e plaquetária, analisando o tempo necessário para cessação de uma hemorragia ocasionada por pequena incisão de dimensões padronizadas, praticadas artificialmente com lanceta apropriada.

A retração do coágulo é um teste de função plaquetária. A porcentagem de retração do coágulo é representada pelo volume do soro obtido após coagulação e retração do coágulo, de uma quantidade determinada de sangue. Influem no teste a quantidade de trombina, de fibrinogênio e valores anormais de hematócrito

O tempo de tromboplastina parcial corresponde ao tempo gasto para ocorrer a coagulação do plasma recalcificado em presença de um fosfolípide ou tromboplastina parcial. Uma deficiência de qualquer fator da coagulação com exceção do fator VII e plaquetário é detectada por este teste.

O tempo, em segundos, anotado desde a recalcificação até a coagulação é o tempo de protrombina (TP). Esta prova determina a concentração de protrombina no sangue e, exige um perfeito controle técnico e laboratorial, especialmente no que se refere à colheita do sangue sem traumatismos e contaminação por líquido tissular.

A prova de resistência capilar mede a resistência capilar sob condições de anóxia e pressão sanguínea capilar aumentada artificialmente por meio de um aparelho para medida da pressão arterial ou garrote de borracha. O resultado é fornecido conforme o número das petéquias formadas, sendo um teste de função vascular e plaquetária.

Granulações azurófilas nos linfócitos.

Corpos de Auer nos mieloblastos.

Granulações neutrófilas nos promielócitos

Anéis de Cabot nas hemácias.

Corpos de Auer nos monócitos