os blocos devem ser mantidos em câmara fria para evitar que a parafina derreta;

os blocos devem ser detalhadamente catalogados para que possam ser localizados com facilidade;

os blocos têm durabilidade de, no mínimo, 30 anos sem apresentar evidências de deterioração.

a qualidade da parafina não influencia a conservação dos blocos;

por lei, os blocos devem ser guardados por, no máximo, seis meses.

Na maioria dos laboratórios, os esfregaços são corados em hematoxilina-eosina (HE), como os exames histopatológicos rotineiros.

O método coloração de Papanicolaou inclui Hematoxilina de Harris, Orange G e Eosina-azur (EA).

O material colhido para exame citológico deve, obrigatoriamente, ser centrifugado antes da coloração.

O material colhido deve ser conservado em gelo.

Apesar da recomendação de fixação dos esfregaços em álcool ou com “spray”, estes devem ser evitados, pois reagem com os corantes e prejudicam a análise microscópica.

O fator mais significativo para a obtenção de uma boa imagem depende do contraste na coloração e da capacidade de ampliação do microscópio.

O fator mais significativo para a obtenção de uma boa imagem é o poder de resolução.

O poder de resolução é limitado pelo comprimento de onda das radiações visíveis, sendo de 0,2 μm.

A propriedade da ampliação só tem interesse prático se for acompanhada de um aumento do poder de resolução.

A ampliação total consiste no produto da ampliação da objetiva pela ampliação da ocular, e, sem distorção, não ultrapassa 1200x.

o tamanho máximo que uma amostra biológica pode ser visualizada;

a distância mínima entre dois pontos para que possam ser distinguidos;

o tamanho aparente da imagem formada em relação ao objeto analisado;

o comprimento de onda da luz usada na observação ao microscópio de luz;

a capacidade de contraste de uma determinada imagem.

ocular;

Charriot;

revólver;

diafragma;

condensador.

São as que produzem o maior aumento.

O excesso de óleo deve ser removido com um papel de filtro e limpas com um cotonete levemente embebido de éter.

Não se deve usar álcool na limpeza do óleo de imersão, pois este não é dissolvido pelo álcool e forma com ele um precipitado branco.

O xilol não deve ser utilizado na limpeza, pois ele pode produzir uma película sobre as lentes e ou dissolver a cola de fixação da lente.

Utiliza-se o óleo de imersão para facilitar o contraste dos corantes.

novo azul de metileno;

verde Janus B;

azul de cresil brilhante;

orceína;

azul triptan.

Estereoscópico.

Invertido.

De polarização.

Confocal.

De contraste de fase.

Alcian blue - proteoglicanas.

Fontana-Manson - hemossiderina.

Sudan Black - lipídios.

Tricrômico de Gomori - colágenos.

Vermelho Congo - amilóide.

o órgão linfoide primário é a medula óssea, onde são gerados os linfócitos B e T; os órgãos linfoides secundários são o timo, os linfonodos, o baço, sistema imune cutâneo e sistema imune associado às mucosas;

os órgãos linfoides primários são a medula óssea, onde são gerados os linfócitos B e o timo, onde são gerados os linfócitos T; os órgãos linfoides secundários são os linfonodos, o baço, o sistema imune cutâneo e o sistema imune associado às mucosas;

os órgãos linfoides primários são a medula óssea, onde são gerados os linfócitos B e T, e o timo, onde os linfócitos T se desenvolvem; os órgãos linfoides secundários são os linfonodos, o baço, o sistema imune cutâneo e o sistema imune mucoso;

os órgãos linfoides primários são a medula óssea, o timo e o baço, que produzem e amadurecem os linfócitos; os órgãos linfoides secundários são os linfonodos, o sistema imune cutâneo e o sistema imune mucoso;

não há esta classificação em órgãos linfoides primários e secundários.