Baermann-Moraes

Rugai

Hoffmann

Willis

A= miracídio; B= esporocistos; C= cercária; D= ovo

A= esporocistos; B= cercária; C= ovo; D= miracídio

A= cercaria; B= ovo; C= miracídio; D= esporocisto

A= ovo; B= miracídio; C= esporocistos; D= cercaria

Echinococcus granulosus

Hymenolepis nana

Necator americanus

Taenia Solium

Toxocara canis

Suspensão titulada de fezes em hidróxido de sódio N/10

Sedimentação espontânea das fezes em água

Centrífugo-sedimentação em um sistema formol-éter

Centrífugo-flutuação em solução de sulfato de zinco

Flutuação de ovos de helmintos em solução saturada de cloreto de sódio

As formas identificadas pelo número 1 na figura são detectadas no exame parasitológico de fezes dos indivíduos contaminados.

O desenvolvimento das formas identificadas pelos números 6 e 7 independe do hospedeiro.

As formas que infectam o homem, penetrando em sua pele, são as indicadas pelo número 3.

Apenas a forma indicada pelo número 3 pode ser detectada nas fezes humanas.

O método de Kato-Katz permite detectar as formas identificadas pelo número 4.

A avaliação da presença de hematúria é feita por meio de análise fotométrica da urina centrifugada, desprezando-se o sedimento.

É possível detectar-se proteinúria pela adição de solução ácida à urina seguida do aquecimento de parte dessa solução.

A análise quantitativa de proteínas da urina é rotineiramente feita utilizando-se o reagente de Fehling.

Se for encontrada a concentração de 45 mg/L de proteínas na urina de um paciente, é correto afastar-se a hipótese de proteinúria.

Considere que o exame microscópico do sedimento apresente imagens cuja interpretação leve à dúvida de serem cristais de oxalato de cálcio ou hemácias. Nesse caso, a dúvida pode ser eliminada pela adição de ácido acético a 2%, que preserva as hemácias e dissolve os cristais.

O material colhido deve ser imediatamente congelado, para preservação durante o envio.

A observação microscópica de diversas hemácias, cada uma contendo um único parasita, confirmaria o diagnóstico de doença de Chagas.

Se a temperatura do material colhido for reduzida a 4 ºC, não há risco de contaminação de quem realizar o transporte, pois os parasitas estarão mortos.

Para o correto procedimento de coleta, é suficiente que o material usado seja previamente submetido a desinfecção.

Se forem encontradas formas tripomastigotas de Tripanosoma cruzi no sangue periférico, o diagnóstico de doença de Chagas estará confirmado.

Uma das etapas mais comuns do ciclo de vida do parasita referido acima envolve a transmissão direta de formas amastigotas de animais, como, por exemplo, do macaco, para o homem.

A transmissão para o vetor ocorre quando este suga sangue que contém formas extracelulares do parasita.

O inseto, ao picar o homem ou outros animais, injeta formas tripomastigotas do parasita que estão em sua saliva.

As formas intracelulares do parasita somente ocorrem em células do vetor.

A doença de Chagas não é transmitida em regiões nas quais o inseto está ausente.

As figuras I e III mostram formas trofomastigotas intracelulares de Tripanosoma cruzi.

A figura II mostra uma forma tripomastigota do Tripanosoma cruzi, que pode ser encontrada na circulação durante a fase aguda da doença.

As figuras II, III e IV mostram diferentes estágios do Tripanosoma cruzi.

Na figura IV, as setas apontam para formas epimastigotas de Tripanosoma cruzi.

A figura V mostra células musculares que contêm formas tripomastigotas de Tripanosoma cruzi.

O achado laboratorial de basofilia associada a eosinopenia sugere infecção por helmintos.

Freqüentemente observa-se anemia de padrão ferroprivo em infecções por ancilostomídeos.

Para o exame parasitológico de fezes deve-se colher, no máximo, 10 g de fezes.

Formalina e álcool polivinílico não devem ser usados em amostras de fezes, pois destroem os parasitos.

Os três métodos disponíveis para concentração de ovos em amostras de fezes são embasados na centrifugação da amostra em diferentes soluções.